| |
|
|
| Registros recuperados : 55 | |
| 5. |  | BENAVIDES, M. V.; ECHEVARRIA, F. A. M.; SONSTEGARD, T. S.; VAN TESSEL, C. P.; GASBARRE, L. C. Genetic variability of a Bos taurus x Bos indicus cross population and validation of genomic regions influencing nematode resistance. In: SIMPOSIO DE RECURSOS GENETICOS PARA AMERICA LATINA Y EL CARIBE, 5., 2005, Montevideo, Uruguay. Resumenes... Montevideo: INIA :Facultad de Agronomía de la Universidad de la República, 2005. p. 105 SIRGEALC. Resumo 305.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sul. |
|    |
| 6. | | SILVA, M. V. G. B.; TASSELL, C. P. V.; SONSTEGARD, T. S.; MATUKUMALLI, L.; SCHROEDER, S.; VANRADEN, P.; WIGGANS, G. Predição do valor genético total de touros da raça Holandesa por meio de mapas densos de marcadores. In: REUNIÃO ANUAL DA SOCIEDADE BRASILEIRA DE ZOOTECNIA. 45., 2008, Lavras, MG. Anais... Viçosa, MG: Sociedade Brasileira de Zootecnia, 2008.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| 8. | | O'BRIEN, A. M. P.; MÉSZÁROS, G.; UTSUNOMIYA, Y. T.; SONSTEGARD, T. S.; GARCIA, J. F.; TASSEL, C. P. V.; CARVALHEIRO, R.; SILVA, M. V. G. B.; SÖLKNER, J. Linkage disequilibrium levels in Bos indicus and Bos taurus cattle using medium and high density SNP chip data and different minor allele frequency distributions. Livestock Science, v. 166, p. 121-132, 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
|  |
| 9. | | PORTO NETO, L. R.; SONSTEGARD, T. S.; LIU, G.; BICKHART, D.; GONDRO, C.; SILVA, M. V. G. B.; UTSUNOMIYA, Y. T.; GARCIA, J. F.; VAN TASSELL, C. P. Genomic divergence of indicine and taurine cattle identified through high-density SNP gebotyping. In: ADSA-ASAS ANNUAL MEETINGS, 2013, Indianápolis, Indiana. Abstracts... Indianápolis: [s.n.], 2013.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| 10. | | ANDREOTE, A. P. D.; ROSÁRIO, M. F. do; LEDUR, M. C.; JORGE, E. C.; SONSTEGARD, T. S.; MATUKUMALLI, L.; COUTINHO, L. L. Identification and characterization of microRNAs expressed in chicken skeletal muscle. Genetics and Molecular Research, v. 6, n. 1, p. 1465-1479, 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Suínos e Aves. |
| |
| 11. | | VENERONI, G. B.; MEIRELLES, S. L.; SANTIAGO, A. C.; SONSTEGARD, T. S.; OLIVEIRA, H. N.; YAMAGISHI, M. E. B.; ALENCAR, M. M. de; REGITANO, L. C. de A. Identification of genomic regions associated with backfat thickness in synthetic cattle. In: WORKSHOP DA REDE GENÔMICA ANIMAL, 1., 2009, Fortaleza. Anais... Fortaleza, Rede Genômica Animal, 2009.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
| |
| 12. | | BENAVIDES, M. V.; SONSTEGARD, T. S.; KEMP, S.; MUGAMBI, J. M.; GIBSON, J. P.; BAKER, R. L.; HANOTTE, O.; MARSHALL, K.; VAN TASSELL, C. Identification of novel loci associated with gastrointestinal parasite resistance in a Red Maasai x Dorper backcross population. Plos One, v. 10, n. 4, e0122797, Apr. 2015.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sul; Embrapa Pesca e Aquicultura. |
| |
| 13. | | GARCIA, J. F.; CARMO, A. S. DO; UTSUNOMIYA, Y. T.; NEVES, H. H. DE R.; CARVALHEIRO, R.; TASSELL, C. V.; SONSTEGARD, T. S.; SILVA, M. V. G. B. How bioinformatics enables livestock applied sciences in the genomic era. In: BRAZILIAN SYMPOSIUM ON BIOINFORMATICS, 2012, Heidelberg. Proceedings... Porto Alegre: Sociedade Brasileira e Computação, 2012.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| 15. | | LIU, G. E.; LI, R. W.; SONSTEGARD, T. S.; MATUKUMALLI, L. K.; SILVA, M. V. G. B.; VAN TASSELL, C. P. Characterization of a novel microdeletion polymorphism on BTA5 in cattle. Animal Genetics, v. 39, n. 6, p. 655-658, 2008.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| 16. | | SILVA, M. V. G. B.; SANTOS, D. J. A. dos; BOISON, S. A.; UTSUNOMIYA, A. T. H.; CARMO, A. S.; SONSTEGARD, T. S.; COLE, J. B.; TASSELL, C. P. V. The development of genomics applied to dairy breeding. Livestock Science, v. 166, p. 66-75, 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| 17. | | REIS, D. R. de L.; PEREIRA, H. P.; EGITO, A. A. do; TORRES JUNIOR, R. A. de A.; KIM, E. S.; SONSTEGARD, T. S.; MARTINS, M. F.; PANETTO, J. C. do C.; SILVA, M. V. G. B.; MACHADO, M. A. Development of tetra-primer ARMS-PCR protocol to genotype the prolactin receptor SNP 39136666 and assessment of this SNP in Brazilian locally adapted cattle breeds. Arquivo Brasileiro e Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 73, p. 534-538, 2021. Communication.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| 18. | | MYTATA, M.; GASPARIN, G.; COUTINHO, L. L.; MARTINEZ, M. L.; MACHADO, M. A.; SILVA, M. V. G. B. da; CAMPOS, A. L.; SONSTEGARD, T. S.; REGITANO, L. C. de A. Mapeamento de QTLS para peso ao nascimento no cromossomo 14 de bovinos In: REUNIÃO ANUAL DA SOCIEDADE BRASILEIRA DE ZOOTECNIA, 42., 2005, Goiânia. A Produção animal e o foco no agronegócio: anais. Goiânia: SBZ, 2005. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
|  |
| 19. | | GASPARIN, G.; MIYATA, M.; COUTINHO, M. L.; MARTINEZ, M. L.; TEODORO, R. L.; FURLONG, J.; MACHADO, M. A.; SILVA, M. V. G. B.; SONSTEGARD, T. S.; REGITANO, L. C. de A. Mapping of quantitative trait loci controlling tick [Riphicephalus (Boophilus) microplus] resistance on bovine chromosomes 5, 7, and 14. Animal Genetics, v. 38, n. 5, p. 453-459, oct. 2007.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
| |
| 20. | | GASPARIN, G.; MIYATA, M.; COUTINHO, L. L.; MARTINEZ, M. L.; TEODORO, R. L.; FURLONG, J.; MACHADO, M. A.; SILVA, M. V. G. B. da; SONSTEGARD, T. S.; REGITANO, L. C. de A. Mapping of quatitative trait loci controlling tick [Riphicephalus (Boophilus) microplus] resistance on bovine chromosomes 5, 7 and 14. Animal Genetics, Oxford, v. 38, n. 5, p. 453-459, 2007.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
| |
| Registros recuperados : 55 | |
|
|
|
Registro Completo
|
Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
|
Data corrente: |
05/09/2016 |
|
Data da última atualização: |
23/09/2019 |
|
Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
|
Autoria: |
SARAIVA, H. F. R. A.; PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; SANTOS, G. B.; RIBEIRO, L. S.; BATISTA, R. I. T. P.; COSENTINO, I. O.; FABJAN, J. M. G. S.; FONSECA, J. F. da; BRANDAO, F. Z. |
|
Afiliação: |
Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; JEFERSON FERREIRA DA FONSECA, CNPC; UFF - Niterói, RJ. |
|
Título: |
Follicular population on the estimation of the superovulatory response in Santa Ines sheep. |
|
Ano de publicação: |
2016 |
|
Fonte/Imprenta: |
Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 532, Jul./Sept. 2016. |
|
Idioma: |
Inglês |
|
Notas: |
Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain, September 9th and 10th, 2016. |
|
Conteúdo: |
Abstract: The aim was to verify the correlation between follicular population count, superovulatory response and the recovery of viable structures in the in vivo production of sheep embryos. Twenty-five nulliparous Santa Inês ewes (11.9 ± 1.1 months old, body score of 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG(Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brazil) were given. Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered.The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg). At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brazil) were administered. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. An ultrasound equipment (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) coupled to a 7,5 MHz linear transducer, by transrectal via was used for the quantification of the follicular population (PF) in two moments: at the beginning of the estrus synchronization (PFESTRUSBASE) and at the time of the first FSH dose (PFFSH-1). Embryo collections were carried out by surgical method, six to seven days after mating, and the viable structures (VS) quantified. The number of CLs (NCLs) was determined by laparoscopy previously to the embryo recovery. The PFESTRUSBASE and PFFSH-1 variables were compared with the NCLs and EV through the Pearson's correlation coefficient and Simple Linear Regression Analysis. For all tests, P < 0.05 was considered as statistically significant. An average of 7.5 ± 4.8 CLs and 4.0 ± 3.5 viable structures were obtained per donor. Significant correlations, medians and low, were found between: PFESTRUSBASE and NCLs (r = 0.45; r2 = 0.17; P < 0.05); PFFSH-1 and NCLs (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05); PFESTRUSBASE and VS (r = 0.55; r2 = 0.27; P < 0.05) and PFFSH-1 and VS (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05). In conclusion, there is a median correlation between follicular population observed by ultrasonography and viable recovered structures after superovulation protocol. Therefore, this tool is not indicated as a screening tool, alone, in the selection of Santa Inês sheep embryo donors. [População folicular na estimação da resposta superovulatória em ovelhas da raça Santa Inês]. Resumo: Objetivou-se verificar a correlação entre a população folicular na resposta superovulatória e na recuperação de estruturas viáveis em programas de produção in vivo de embriões ovinos. Vinte e cinco ovelhas nulíparas da raça Santa Inês (11,9 ± 1,1 meses, ECC: 2,8 ± 0,3) foram superovuladas utilizando-se o cio base para início do protocolo (D0). Para sincronização prévia da emergência folicular, manteve-se por seis dias um implante vaginal contendo 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil), 24 horas antes da remoção do implante aplicou-se 300 UI de eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil) e 0,24mg de cloprostenol sódico (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brasil). Trinta e seis horas após a remoção da esponja, os animais receberam 25 ?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). A superovulação iniciou 80 horas após a retirada da esponja. Utilizou-se 200 mg de FSH/por animal (Folltropin®, União Química Farmacêutica Nacional S/A, São Paulo, Brasil) em seis doses decrescentes a cada 12 horas (50/50, 30/30, 20/20 mg). Na última dose de FSH, aplicou-se 0,24 mg de cloprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e, 24 horas após, 0,025 mg de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). Em paralelo, na primeira dose de FSH uma nova esponja (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil) foi inserida e removida na penúltima dose deste hormônio. Após a última dose de FSH realizou-se monta natural controlada a cada 12 horas. Utilizouse um aparelho de ultrassom (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) acoplado a um transdutor linear de 7,5MHz, por via transretal, para a quantificação da população folicular (PF) em dois momentos: no início do protocolo de sincronização do estro base (PFESTROBASE) e no momento da aplicação da primeira dose de FSH (PFFSH-1). As coletas foram realizadas por via cirúrgica, seis a sete dias após as coberturas, e as estruturas viáveis (EV) quantificadas. O número de CLs (NCLs) foi determinado por laparoscopia no dia da recuperação embrionária. As variáveis PFESTROBASE e PFFSH-1 foram comparadas com o NCLs e EV por meio do Índice de Correlação de Person e pela Análise de Regressão Linear Simples. Para todos os testes, considerou-se 5% de significância. Foram obtidos 7,5 ± 4,8 corpos lúteos e 4,0 ± 3,5 estruturas viáveis por doadora. Foram encontradas correlações significativas, medianas e baixas, entre o PFESTROBASE e NCLs (r=0,45; r2=0,17; p<0,05); PFFSH-1 e NCLs (r=0,41; r2=0,13; p<0,05); PFESTROBASE e EV (r=0,55; r2=0,27; p<0,05) e também entre o PFFSH-1 e EV (r=0,41; r2=0,13; p<0,05). Em conclusão, existe uma correlação mediana entre população folicular observada por ultrassonografia e estruturas viáveis recuperadas após protocolo de superovulação. Assim, esta metodologia não é indicada como ferramenta de triagem isolada na seleção de ovelhas doadoras de embriões da raça Santa Inês. MenosAbstract: The aim was to verify the correlation between follicular population count, superovulatory response and the recovery of viable structures in the in vivo production of sheep embryos. Twenty-five nulliparous Santa Inês ewes (11.9 ± 1.1 months old, body score of 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG(Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brazil) were given. Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered.The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg). At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brazil) were administered. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. An ultrasound equipment (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) coupled to a 7,5 MHz linear transducer, by transrectal via was used for the quantification of the follicular population (P... Mostrar Tudo |
|
Palavras-Chave: |
FSH; Raça Santa Inês. |
|
Thesagro: |
Ovelha; Ovino; Reprodução animal; Superovulação. |
|
Thesaurus NAL: |
Ewes; Sheep; Superovulation. |
|
Categoria do assunto: |
-- |
|
URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/147091/1/cnpc-2016-Follicular-population.pdf
|
|
Marc: |
LEADER 07107nam a2200337 a 4500
001 2052405
005 2019-09-23
008 2016 bl uuuu u00u1 u #d
100 1 $aSARAIVA, H. F. R. A.
245 $aFollicular population on the estimation of the superovulatory response in Santa Ines sheep.$h[electronic resource]
260 $aAnimal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 532, Jul./Sept. 2016.$c2016
500 $aProceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain, September 9th and 10th, 2016.
520 $aAbstract: The aim was to verify the correlation between follicular population count, superovulatory response and the recovery of viable structures in the in vivo production of sheep embryos. Twenty-five nulliparous Santa Inês ewes (11.9 ± 1.1 months old, body score of 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG(Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brazil) were given. Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered.The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg). At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brazil) were administered. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. An ultrasound equipment (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) coupled to a 7,5 MHz linear transducer, by transrectal via was used for the quantification of the follicular population (PF) in two moments: at the beginning of the estrus synchronization (PFESTRUSBASE) and at the time of the first FSH dose (PFFSH-1). Embryo collections were carried out by surgical method, six to seven days after mating, and the viable structures (VS) quantified. The number of CLs (NCLs) was determined by laparoscopy previously to the embryo recovery. The PFESTRUSBASE and PFFSH-1 variables were compared with the NCLs and EV through the Pearson's correlation coefficient and Simple Linear Regression Analysis. For all tests, P < 0.05 was considered as statistically significant. An average of 7.5 ± 4.8 CLs and 4.0 ± 3.5 viable structures were obtained per donor. Significant correlations, medians and low, were found between: PFESTRUSBASE and NCLs (r = 0.45; r2 = 0.17; P < 0.05); PFFSH-1 and NCLs (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05); PFESTRUSBASE and VS (r = 0.55; r2 = 0.27; P < 0.05) and PFFSH-1 and VS (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05). In conclusion, there is a median correlation between follicular population observed by ultrasonography and viable recovered structures after superovulation protocol. Therefore, this tool is not indicated as a screening tool, alone, in the selection of Santa Inês sheep embryo donors. [População folicular na estimação da resposta superovulatória em ovelhas da raça Santa Inês]. Resumo: Objetivou-se verificar a correlação entre a população folicular na resposta superovulatória e na recuperação de estruturas viáveis em programas de produção in vivo de embriões ovinos. Vinte e cinco ovelhas nulíparas da raça Santa Inês (11,9 ± 1,1 meses, ECC: 2,8 ± 0,3) foram superovuladas utilizando-se o cio base para início do protocolo (D0). Para sincronização prévia da emergência folicular, manteve-se por seis dias um implante vaginal contendo 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil), 24 horas antes da remoção do implante aplicou-se 300 UI de eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil) e 0,24mg de cloprostenol sódico (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brasil). Trinta e seis horas após a remoção da esponja, os animais receberam 25 ?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). A superovulação iniciou 80 horas após a retirada da esponja. Utilizou-se 200 mg de FSH/por animal (Folltropin®, União Química Farmacêutica Nacional S/A, São Paulo, Brasil) em seis doses decrescentes a cada 12 horas (50/50, 30/30, 20/20 mg). Na última dose de FSH, aplicou-se 0,24 mg de cloprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e, 24 horas após, 0,025 mg de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). Em paralelo, na primeira dose de FSH uma nova esponja (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil) foi inserida e removida na penúltima dose deste hormônio. Após a última dose de FSH realizou-se monta natural controlada a cada 12 horas. Utilizouse um aparelho de ultrassom (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) acoplado a um transdutor linear de 7,5MHz, por via transretal, para a quantificação da população folicular (PF) em dois momentos: no início do protocolo de sincronização do estro base (PFESTROBASE) e no momento da aplicação da primeira dose de FSH (PFFSH-1). As coletas foram realizadas por via cirúrgica, seis a sete dias após as coberturas, e as estruturas viáveis (EV) quantificadas. O número de CLs (NCLs) foi determinado por laparoscopia no dia da recuperação embrionária. As variáveis PFESTROBASE e PFFSH-1 foram comparadas com o NCLs e EV por meio do Índice de Correlação de Person e pela Análise de Regressão Linear Simples. Para todos os testes, considerou-se 5% de significância. Foram obtidos 7,5 ± 4,8 corpos lúteos e 4,0 ± 3,5 estruturas viáveis por doadora. Foram encontradas correlações significativas, medianas e baixas, entre o PFESTROBASE e NCLs (r=0,45; r2=0,17; p<0,05); PFFSH-1 e NCLs (r=0,41; r2=0,13; p<0,05); PFESTROBASE e EV (r=0,55; r2=0,27; p<0,05) e também entre o PFFSH-1 e EV (r=0,41; r2=0,13; p<0,05). Em conclusão, existe uma correlação mediana entre população folicular observada por ultrassonografia e estruturas viáveis recuperadas após protocolo de superovulação. Assim, esta metodologia não é indicada como ferramenta de triagem isolada na seleção de ovelhas doadoras de embriões da raça Santa Inês.
650 $aEwes
650 $aSheep
650 $aSuperovulation
650 $aOvelha
650 $aOvino
650 $aReprodução animal
650 $aSuperovulação
653 $aFSH
653 $aRaça Santa Inês
700 1 $aPINTO, P. H. N.
700 1 $aBRAGANÇA, G. M.
700 1 $aSANTOS, G. B.
700 1 $aRIBEIRO, L. S.
700 1 $aBATISTA, R. I. T. P.
700 1 $aCOSENTINO, I. O.
700 1 $aFABJAN, J. M. G. S.
700 1 $aFONSECA, J. F. da
700 1 $aBRANDAO, F. Z.
Download
Esconder MarcMostrar Marc Completo |
|
Registro original: |
Embrapa Caprinos e Ovinos (CNPC) |
|
|
Biblioteca |
ID |
Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
Fechar
|
| Expressão de busca inválida. Verifique!!! |
|
|
